Provtagning för blododling

Tillvägagångssätt - vuxna

Om annan venös provtagning ska göras samtidigt som blododling så tas blododlingen först. Läs om rekommenderad ordningsföljd för provrör under rubriken Provrör på sidan Förberedelser.

Välj punktionsställe (perifer ven).
Desinfektera punktionsstället, med klorhexidinsprit (5 mg/mL) eller motsvarande genom att gnida in huden med ordentligt genomblöt kompress under minst 5 sekunder. Huden ska vara fuktig i minst 30 sekunder innan den torkar. Vid för kort desinfektionstid kan blododlingen kontamineras med hudbakterier. Klorhexidinsprit har snabbare effekt på huden än alkohol utan klorhexidin. Vid överkänslighet mot klorhexidin används 70 % etanol alternativt cirka 60 % isopropylalkohol.
Berör inte den desinfekterade huden där venpunktion ska göras. Huden ska vara torr innan venpunktion görs.
Desinfektera även membranet till blododlingsflaskorna under minst 5 sekunder.
Låt desinfektionsmedlet torka.
Alla flaskor tas därefter med fördel från samma stick (gäller vid perifert tagen odling). Användning av vingkanyl (butterfly) rekommenderas på grund av möjligheten att placera flaskan lägre än provtagningsstället. Detta medför att blodet lättare rinner ner i flaskan.
Avskilj den första portionen blod (3-5 mL) i ett vakuumrör med desinfekterad kork. Röret kasseras.
Aerob flaska fylls före anaerob flaska. Rekommenderad turordning: 1 aerob, 2 anaerob, 3 aerob, 4 anaerob.
Total blodvolym per odlingsomgång bör uppnå minst 40 mL (minst 10 mL/flaska).
Transport till inkubator sker skyndsamt. Inkubation ska helst påbörjas inom 2 timmar efter provtagning. I väntan på inkubation ska flaskorna förvaras i rumstemperatur.

Läs mer om rekommenderade metoder utgivna av föreningen för klinisk mikrobiologi [8].

Provtagning genom perifer venkateter (PVK) kan ske i samband med att PVK sätts.

Provtagning genom subkutan venport görs endast i undantagsfall på grund av risk för kontamination. Om provtagning sker på detta sätt ska det tydligt anges på remissen. Läs mer i Vårdhandbokens texter om subkutan venport.

Se även lokala provtagningsanvisningar.

Tillvägagångssätt - barn

Om annan venös provtagning ska göras samtidigt som blododling så tas blododlingen först. Läs om rekommenderad ordningsföljd för provrör under rubriken Provrör på sidan Förberedelser.

Välj punktionsställe (perifer ven).
Desinfektera punktionsstället med klorhexidinsprit (5 mg/mL) genom att gnida in huden med ordentligt genomblöt kompress under minst 5 sekunder. Huden ska vara fuktig i minst 30 sekunder innan den torkar. Vid för kort desinfektionstid kan blododlingen kontamineras med hudbakterier. Klorhexidinsprit har snabbare effekt på huden än alkohol utan klorhexidin. Vid överkänslighet mot klorhexidin används 70 % etanol alternativt cirka 60 % isopropanol.

Spädbarn och fullgångna nyfödda barn - använd lätt fuktad tork med klorhexidinsprit för huddesinfektion. Rekommenderad ingnidningstid är 20-30 sekunder.
För tidigt födda barn - använd klorhexidinlösning 0,1 %. Rekommenderad ingnidningstid är 20-30 sekunder.

3. Berör inte den desinfekterade huden där venpunktion ska göras. Huden ska vara torr innan venpunktion görs.

4. Desinfektera även membranet till blododlingsflaskan/flaskorna under minst 5 sekunder.

5. Låt desinfektionsmedlet torka.

6. För rekommenderad blodvolym, antal flaskor och avskiljning av första blodportionen, var god se tabell 1 nedan. Vid odling i mer än en flaska tas alla flaskor med fördel från ett och samma stick (gäller vid perifert tagen odling). Aerob flaska fylls före anaerob flaska. För beräkning av rekommenderad blodvolym, var god se tabell 2 nedan.

7. Transport till inkubator sker skyndsamt. Inkubation ska helst påbörjas inom 2 timmar efter provtagning. I väntan på inkubation ska flaskorna förvaras i rumstemperatur.

Provtagning genom perifer venkateter (PVK) kan ske i samband med att PVK sätts.

På barn under neonatalperioden kan blododling via navelkateter vara nödvändig om perifer provtagning ej är möjlig. I dessa fall aspireras blod med steril spruta och inokuleras, efter byte till ren kanyl, till odlingsflaskan. Ange tydligt på remissen varifrån odlingen tagits. Man bör dock vara medveten om den ökade risken för kontamination som föreligger vid odling från kvarliggande kateter jämfört med perifert stick. Läs mer i Vårdhandbokens texter om subkutan venport.

Se även lokala provtagningsanvisningar.

Rekommenderad blodvolym för blododling, barn
Vikt (kg)	≤1	2	3	5	10	15	20	25	30	40	50
Tabell 1. * Observera att den pediatriska flaskan (barnflaska) är en aerob odlingsflaska. Vid misstanke om växt av anaeroba bakterier bör komplettering med eller fördelning i anaerob vuxenflaska övervägas.
Rekommenderad blodvolym för blododling (mL)	(0,5-) 1	1-2	2-3	3-5	5-10	10-15	15-20	20-25	25-30	30-35	35-40
Rekommenderad flasktyp: Pf = pediatrisk flaska* (barnflaska) Ae = aerob flaska An = Anaerob flaska	Pf	Pf	Pf	Pf	Ae x 1	Ae x 1-2 alt. Ae + An	Ae + An	Ae x 1-2 + An	Ae x 2 + An	Ae x 2 + An x 2	Ae x 2 + An x 2

Anaeroba infektioner hos barn

Exempel på anaeroba infektioner hos barn är bukinfektion, abscesser, Lemierres syndrom, protesendokardit, nekrotiserande enterokolit (NEC) eller misstänkt sepsis hos neonatala barn som erhållit profylaktiskt probiotika, nekrotiserande fasciit/cellulit.

Underlag för beräkning av rekommenderad blodvolym för blododling barn
Vikt (kg)	≤1	2	3	5	10	15	20	25	30	40	50
Tabell 2.
Blodvolym/kg (mL/kg)	85-100	85-100	80	80	80	80	80	80	80	80	70
Total blodvolym (mL)	85-100	170-200	240	400	800	1200	1600	2000	2400	3200	3500
1 % av total blodvolym (mL)	0,85-1,0	1,7-2,0	2,4	4	8	12	16	20	24	32	35
Andel rekommenderad blodvolym för odling av total blodvolym (%)	0,5-1,2	0,5-1,2	0,8-1,25	0,8-1,25	0,6-1,25	0,8-1,25	0,9-1,25	1-1,25	1-1,25	0,9-1,1	1-1,1